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Cell: AI+SomaScan液体活检,构建眼睛为窗口的“衰老时钟”

2024-06-07
中科新生命
1092

活体单细胞转录组测序对拆解细胞类型、明确细胞组成、剖析细胞内基因差异表达,进而理解疾病发生机制至关重要,然而受限于单细胞转录组多检测组织样本,当样本类型为眼睛,大脑等非再生器官时,组织活检会直接造成严重且不可逆转的功能损伤。此时,想要详细阐明此类样本疾病发生时的细胞变化特征,仍具极大挑战性。是否有新的方法解决这一难题呢?今天跟大家分享的一篇Cell文章,以人眼为例,取房水和玻璃体进行SomaScan检测,通过眼部的蛋白质信息溯源细胞类型,解析疾病机制以及衰老与疾病之间的联系,为衰老的靶向治疗提供分子和细胞靶点。

 

 

 研究技术

1.样本信息:120例液体活检样本。详细信息如下:

①鉴定细胞类型特异性标记蛋白:12例健康房水(AH)和12例健康玻璃体样本;

②构建人工智能衰老模型:34例健康AH和①中12例健康AH样本;

③疾病样本:15份糖尿病视网膜病变(Diabetic retinopathy ,DR)患者、10份糖尿病但无DR患者、6份葡萄膜炎患者、7份视网膜色素变性(retinitis pigmentosa,RP)患者、5份PD患者、19份白内障患者的AH样本;

2.组学选择:SomaScan

图1 多组学方法确定液体活检蛋白的细胞起源

图1 多组学方法确定液体活检蛋白的细胞起源

 

 

 技术路线

步骤1:利用SomaScan获得AH和玻璃体中的蛋白质丰度信息;

步骤2:结合已发表的人类眼部scRNA-seq数据,确定细胞类型特异性标记蛋白质;

步骤3:利用细胞类型特异性标记蛋白质丰度变化,溯源RP疾病期间,组织内的细胞回路;

步骤4:利用细胞类型特异性标记蛋白质丰度变化,溯源驱动DR发病进程的关键细胞;

步骤5:利用细胞类型特异性标记蛋白质丰度变化,溯源脑疾病相关蛋白质及细胞类型;

步骤6:剖析年龄增长过程中,眼睛功能(分子)衰老的变化轨迹;

步骤7:构建人工智能模型预测眼睛功能(分子)年龄,验证眼部疾病会加速眼睛分子衰老。

 

 

 研究结果

1. 多组学方法确定液体活检蛋白的细胞起源

利用SomaScan共检测出6345种蛋白质,其中房水与玻璃体中检测出的蛋白有87%的重叠度,表明两种组织中存在大量蛋白质交换(图2A)。结合已发表的眼部和眼外scRNA-seq数据,有5923种蛋白质在RNA-seq数据中确认了相应基因的表达,对其进行无监督聚类分析,发现其呈现细胞类型依赖,而非组织类型依赖(图2B)。多组学数据整合鉴定出1920种细胞类型标记蛋白,在各自细胞类型中具有高度特异性表达(图2C),如:神经节细胞(n=114)、锥状光感受器(n=56)、T细胞(n=33)。整体数据表明,可以在不需要直接组织活检的情况下,通过液体活检中的细胞特异性蛋白质,实现对非再生组织疾病的活体细胞类型进行分子监测。

图2 液体活检中细胞类型特异性标记蛋白

图2 液体活检中细胞类型特异性标记蛋白

A:眼外组织中检测到的蛋白及相应基因的表达数量;B:基于蛋白编码基因对所有细胞类型进行无监督聚类;C:液体活检中细胞类型特异性标记蛋白,括号内为蛋白质数量

 

2. 对疾病期间,组织内的细胞回路进行分子监测

RP是一种罕见的遗传性视网膜疾病(图3A),为从分子层面评估活人RP的病理。作者对已鉴定的1920个细胞类型特异性标记蛋白进行丰度分析,发现杆状光感受器特异性蛋白在RP患者中显著减少,锥状光感受器、视网膜双极细胞、视网膜无突细胞、红细胞、血管内皮细胞的标记蛋白减少次之。而其他类型的视网膜细胞,包括水平细胞和神经节细胞,相对不受影响(图3B)。

用同样方式对葡萄膜炎患者进一步分析,发现各种免疫细胞的数百种标记蛋白显著增加。同时,部分视网膜细胞也出现一定的分子损伤。

图3 组织疾病可通过局部液体活检进行分子监测

图3 组织疾病可通过局部液体活检进行分子监测

A:视网膜色素变性(RP)的临床表现;B:柱状图:相比于对照患者,RP患者中细胞类型特异性标记蛋白变化;箱型图:每种指示细胞类型的前10个标记蛋白的蛋白质水平

 

 

3. 驱动DR发病阶段转换的细胞因素

根据血管损伤和血管通透性可将DR发病阶段划分为:健康期、非增殖期(NPDR)、增殖期(PDR)(图4A)。当前,多使用成像技术评估DR视网膜结构变化,为明确DR发病进程中关键的细胞驱动因素,作者对DR患者房水中,细胞类型特异性标记蛋白变化进行分析,发现相比于健康人群,DR中共有58种血管生成蛋白差异富集,有29种蛋白在PDR中特异性升高,其中包括VEGFA,该蛋白是PDR和NPDR的治疗靶点。桑基图表明,PDR特异性血管生成蛋白主要来自于一些免疫细胞,如巨噬细胞、中性粒细胞、视网膜小胶质细胞(图4C)。不同于NPDR,PDR是由一组独特的血管生成细胞和血管生成因子驱动。

图4 DR不同阶段中分子和细胞的变化特征

图4 DR不同阶段中分子和细胞的变化特征

A:DR的临床特点;B:房水活检中细胞类型特异性标记蛋白统计;C:血管生成蛋白在健康者、NPDR、PDR患者中的表达量热图。箱型图:NPDR、PDR中前10种血管生成蛋白质表达水平。桑基图:NPDR、PDR中前10种血管生成蛋白质的细胞溯源

 

 

4. 用房水蛋白质组挖掘脑疾病相关蛋白

由于脑组织活检极为复杂,神经退行性疾病(如帕金森病,PD)的诊断和预后评估通常具有挑战性。作者发现PD患者和对照患者的房水之间存在明显差异,有18个PD相关蛋白质在房水中检出,其中9个在PD中显著升高(图5A)。细胞类型涉及神经节细胞、无长突细胞、双极细胞、水平细胞、锥细胞和杆状细胞(图5B)。同时,作者还发现杆状和锥光感受器特异性蛋白质丰度发生变化,此信息并未通过解剖数据观察到,暗示分子生物标志物可能比成像、结构生物标志物更敏感,该结果在分子和细胞水平上重新定义了视网膜中的PD表型信息。

图5 房水反应帕金森患者的蛋白质分子特征

图5 房水反应帕金森患者的蛋白质分子特征

A:PD患者与对照患者房水中PD相关蛋白质的丰度信息;B:桑基图展示PD相关蛋白质的细胞起源;C:柱状图展示细胞类型特异性标记蛋白。箱型图展示不同细胞类型中前10种蛋白质在PD患者和对照患者中的丰度信息

 

5. 眼睛的分子年龄遵循非线性轨迹

多项研究表明,组织的功能老化与生物体的实际年龄存在差异。为剖析哪些细胞驱动了眼睛功能衰老。随后,作者发现在健康眼睛中,有6313种蛋白随着衰老而出现波动变化(图6A)。无监督分层聚类分析将6313种蛋白质分为10个具有相似轨迹的Cluster(图6B)。随着年龄增长,几乎所有的Cluster都显示出非线性轨迹,其中有7个Cluster富集到生物通路和特定细胞类型。如晶状体和睫状体特异性蛋白在50岁左右达到峰值(Cluster6,图6H);来自免疫细胞的蛋白质,如巨噬细胞、中性粒细胞和视网膜小胶质细胞在80岁之前保持相对稳定,然后显著增加(Cluster2,图6D);来自视网膜细胞的蛋白质,包括锥细胞和神经节细胞,从80岁左右开始急剧下降(Cluster9,图6K)。整体结果表明:①眼睛蛋白质组在正常衰老过程中的变化主要沿着非线性轨迹;②衰老过程可能在很大程度上是器官特异性的;③特定的途径和细胞类型在眼睛和衰老过程中起着关键作用。

图6 眼睛的分子功能主要遵循非线性轨迹

图6 眼睛的分子功能主要遵循非线性轨迹

A:对房水蛋白质水平进行z-score评分,估计6313个房水蛋白质随年龄变化的分子轨迹;B:无监督聚类分析将具有相似变化轨迹的蛋白质进行聚类;C-L:10个Cluster中蛋白质随年龄的变化轨迹;M-P:参与衰老相关过程的分子蛋白质变化轨迹

 

6. 人工智能模型预测眼睛分子年龄并验证眼部疾病会加速眼睛分子衰老

最后,作者在46名健康患者的训练队列中训练了10倍交叉验证的XGBoost模型,已预测患者的实际年龄,该模型在19名健康患者的独立独立额中进行了前瞻性验证,结果表明该验证队列具有较强的年龄预测能力,表明AI可以准确评估健康眼睛的分子年龄(图7A-C)。进一步将模型应用于与生理年龄无关的眼病患者中,发现NPDR患者、PDR患者、RP患者、葡萄膜炎患者预测的分子年龄均比健康患者大,暗示患病的眼睛会加速衰老,为衰老和疾病过程之间的重叠提供了迄今为止最有力的分子证据。

随后,作者进一步探讨疾病是否与特定细胞类型的加速衰老有关。利用人工智能,根据各自细胞类型的特异性蛋白质来预测血管、免疫和视网膜年龄,发现在训练组和验证组中,眼病涉及疾病特异性细胞类型的加速衰老:如PDR中的血管细胞,葡萄膜炎中的免疫细胞、RP中的视网膜细胞。同时发现,在没有任何临床可见的视网膜病变迹象的糖尿病患者中,免疫细胞和视网膜细胞的加速衰老已经开始。进一步强调评估细胞类型特异性衰老而不是整个器官衰老的潜在重要性,且分子评估可能比目前的临床成像技术更敏感。

图7 人工智能模型预测眼睛的整体和细胞分子年龄

图7 人工智能模型预测眼睛的整体和细胞分子年龄

 

 

 总结

(1)为什么是SomaScan:房水的蛋白质组学分析一直受其低体积和低蛋白浓度的挑战,利用SomaScan可实现低样本量的蛋白质组深度检测,确保了房水样本中蛋白质的高效检出,为发现大量先前从未报道过的房水和玻璃体中共有蛋白质奠定重要基础,也会后续准确挖掘蛋白质标志物提供有力保障;

(2)液体活检样本发现潜在干预靶点:眼睛,大脑等这类非再生器官,人体活体取样是极为艰难的,而小的活检组织可能会错过细胞异质性中的关键疾病区域。利用房水、玻璃体的组织特殊性可直接揭示眼睛衰老的蛋白质标志物并溯源驱动眼睛衰老的细胞类型。该研究策略同样适用于脑(脑脊液)、肺(支气管肺泡灌洗液)、肾(尿液)、乳房(母乳)、关节(滑液)等研究领域。

 

 

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